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2023-08-17 阅读(432)
利用pFastBac1进行目的蛋白的表达的时候,根据方式的需要以及融合表达目的蛋白以提高其表达量的需要,可以在质粒构建时添加His标签或GST标签。为了防止额外添加的His和GST等蛋白标签影响目的蛋白的生物学功能和结构研究,可在融合蛋白和标签之间添加蛋白酶酶切位点,如TEV或PreScission的酶切位点。如果蛋白主要以可溶形式表达,离心收集昆虫细胞,超声裂解细胞,但由于昆虫细胞内蛋白酶种类比较多,需要添加各种。离心收集超声后上清,使用镍柱或GST柱等纯化目的蛋白。同时可以利用离子交换、分子筛层析等进一步纯化目的蛋白。纯化获得的蛋白,可以添加适量甘油后保存,或者如果有需要也可以适当浓缩后保存等。
培养昆虫细胞至密度达到5×106~1×107活细胞/ml,活性≥90%。用培养基将细胞稀释成2.5×106活细胞/ml 稀释液,27℃、127 r/min 恢复25 min。用Opti⁃MEMTMI 无血清培养基稀释 ExpiFectamineTMSf 转染试剂,并加入 Bacmid DNA(pc1⁃mfp5以及gus),室温孵育5 min,随后滴加到100 ml细胞稀释液中。27℃、127 r/min孵育72~96 h至细胞存活率降至 60%~80%,300×g 离心 5 min,保留上清即P0代病毒。
使用 ExpiSfTMCD 培养基制备连续 10 倍的病毒稀释液(10-2、10-3、10-4、10-5),并在培养基中将细胞稀释至1.25×106活细胞/ml。将1 ml 病毒稀释液添加到24深孔板中(每个稀释液1孔),随后将1 ml ExpiSfTMCD培养基添加到无病毒的阴性对照中。将800 μl细胞悬液添加到8个病毒稀释液以及阴性对照孔中,并在27℃、227 r/min 摇床中避光孵育14~16 h。将24深孔板中细胞分别取出,300×g离心5 min,弃上清。细胞沉淀重悬于100 μl 稀释的gp64APC抗体中,涡旋 3~5 s,室温孵育 30 min,PBS洗涤后重悬于1 ml胎牛血清稀释液中,通过流式细胞仪进行鉴定。
培养细胞至细胞密度达到 5×106~1×107活细胞/ml,活性≥90%,用培养基稀释至最终密度为5×106活细胞/ml,立即加入ExpiSfTM转染增强剂,在127 r/min,27℃摇床上孵育18~24 h。当细胞密度恢复至5×106~7×106活细胞/ml,活性≥80%时分别使用病毒感染复数(multiplicity of infection,MOI,平均每个细胞的病毒感染数)30、60 以及 120的杆状病毒感染细胞,27℃、127 r/min培养直至细胞活性降至30%以下,300×g离心5min取上清。取200 μl细胞上清液以及细胞裂解液分别加入50 μl 5×SDS缓冲液,沸水煮6 min,进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,在90 V、90 min的状态下电转至醋酸纤维膜上。5% 脱脂奶粉封闭1 h,进行聚丙烯酰胺凝胶电泳验证目的蛋白的表达情况,纯化之后还可以通过SDS-PAGE验证,结合灰度分析验证蛋白的纯度
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