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2024-01-25 阅读(329)
近年来,纯化单克隆抗体的方法在很大程度上得到了发展。总的来说,每一步都是实现从澄清的收获物中去除特定的杂质。一个特定的色谱步骤是由有关抗体的物理化学性质决定的。由于抗体的特性不同,对特定单抗有效的特定色谱方法可能不能对不同的单抗有效工作。
一.纯化过程中涉及的柱子
双色谱柱纯化 |
三色谱柱纯化 |
四色谱柱纯化 |
亲和色谱法(protein A、G或La);阳离子交换柱 |
亲和色谱法(protein A、G或La);阳离子交换柱;阴离子交换柱 |
亲和色谱法(protein A、G或La);阳离子交换柱;阴离子交换柱;HIC(Hydrophobic)Interaction) |
二.用于抗体纯化的各种亲和蛋白的性质
亲和结合蛋白 |
分子量 |
结合域 |
Ig-结合靶点 |
Protein A (SpA) |
40–60 kDa |
5 for IgG |
IgG的重链常数区(Fc)(CH2-CH3区) |
Protein G (SpG) |
40–65 kDa |
1 to 2 for IgG
0 to 2 for HSA |
IgG的重链常数区(Fc)(CH2-CH3区) |
Protein L (SpL) |
76 kDa |
5 for Ig |
Igs的kappa轻链(VL-kappa) |
三.离子交换法
所有单克隆抗体均具有7.3-8.9范围内的基本等电点。一个抗体的等电点决定了该抗体在离子交换色谱中的洗脱作用。如果pH保持在抗体pI以下,则抗体携带净正电荷。当pH保持在抗体的pI以上时,抗体获得一个净负电荷。阳离子交换或阴离子交换色度基于要去除的目标杂质,可以在纯化方案中实现聚合物。阳离子交换主要用于与产品相关的杂质,如宿主细胞蛋白,而阴离子交换则用于去除宿主细胞DNA和宿主细胞蛋白质。阴离子交换色谱也可作为一个重要的柱子,以证明病毒清除通过净化过程。阴离子交换是通过一种流动模式来实现的,在这种模式中,所有带负电荷的杂质都结合到柱上,而带正电荷的抗体在流经时被洗脱。
四.亲和层析纯化单克隆抗体实验步骤
1. 用10mL适合IgG亚类的结合缓冲液平衡HiTrap protein A柱(1mL)。该柱应用于单小鼠腹水(5-15 mg免疫球蛋白/单小鼠腹水)。
2. 用等体积的结合缓冲液稀释腹水,并以0.5 mL/min的流速涂抹在柱子上。保留流通部分以避免失去无边界的抗体。
3. 用10mL结合缓冲液以1mL/min的流速洗涤柱。
4. 用2-5柱体积的适用于IgG亚类的洗脱缓冲液洗脱结合的蛋白质,并使用级分收集器收集0.5 mL级分。测量A280以定位洗脱的蛋白质。合并蛋白质组分,并用1 M Tris–HCl缓冲液(pH 9.0)中和(用pH试纸检查)。
5. 透析洗脱蛋白至2L PBS中,4℃过夜。
6. 分装成1mL/管冻于-80℃保存。
五.其他纯化方式
Protein A步骤后,通常会保留微量工艺相关污染物(如宿主细胞蛋白质(HCP)、DNA、浸出的protein A、内毒素和一些细胞培养基添加剂),以及产品相关杂质(高分子量聚集体和低分子量降解产物)。随后的色度层析工艺通常被描述为抛光步骤,因为它们将微量杂质降低到确保产品安全的水平。
包括阳离子交换(CEX)、阴离子交换(AEX)、疏水相互作用(HIC)和羟基磷灰石(HA)在内的各种色谱模式已被用作抗体纯化过程中的修饰步骤。固定化金属螯合物亲和色谱法(IMAC)和尺寸排阻色谱法(SEC)的使用虽然不太常见,但也有报道。
离子交换色谱 |
疏水作用层析 |
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AEX色谱法 |
CEX色谱法 |
HIC色谱法 |
HA色谱法 |
大多数人类抗体的高pI限制了它们在该方法的典型pH条件下(pH 7-8)与AEX树脂结合。较高的pH条件可以增加抗体结合的能力,但通常避免这样做,以最大限度地降低脱酰胺和蛋白水解的风险。DNA、HCP和内毒素等杂质带负电,因此在相同条件下与AEX柱强烈结合。 |
CEX已被证明在特定情况下可以清除HCP和浸出蛋白A,以及高分子量(HMW)聚集体。CEX在去除浸出蛋白A方面比AEX更有效,因为蛋白A相对酸性,因此其保留力不如抗体,导致其在流动或通过中间pH洗涤时被去除。与抗体结合的浸出蛋白A片段也可以通过应用中间pH洗涤来去除。 |
在HIC中,蛋白质在固定相上的吸附随着盐浓度的增加而增加,通过降低盐浓度来实现洗脱。HIC通常对HMW聚集体的还原非常有效,因为后者通常比mAb产品更疏水,并且更好地保留在HIC树脂上。 |
HA是一种钙矿物,HA色谱法是抗体制造中一种非常选择性的层析步骤,能够去除HCP、聚集体和浸出的蛋白A。在这种模式下,聚集体和蛋白A-IgG复合物往往比大多数抗体更好地保留。此外,由于钙位点和DNA磷酸主链之间的强烈相互作用,DNA通常在大多数抗体之后洗脱。 |
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